تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری

تعداد صفحات: 109 فرمت فایل: word کد فایل: 10406
سال: مشخص نشده مقطع: مشخص نشده دسته بندی: علوم پزشکی
قیمت قدیم:۲۹,۵۰۰ تومان
قیمت: ۲۴,۰۰۰ تومان
دانلود مقاله
  • خلاصه
  • فهرست و منابع
  • خلاصه تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری

    مقدمه:

    اولین گزارشات در ارتباط با ساختارهای درون سلولی شبه میتوکندری به 150 سال پیش برمی‌گردد. واژه میتوکندری که از دو کلمه یونانی mitos بمعنی نخ یا رشته و chondros به معنی گرانول منشا گرفته است؛ برای اولین بار صد سال پیش مورد استفاده قرار گرفت. عملکرد اصلی این ارگانل کروی یا میله‌ای شکل که صدها عدد از آن در یک سلول وجود دارد، فسفریلاسیون اکسیداتیو است؛ بعبارت دیگر اکسیداسیون سوبستراها به Co2 و آب و فراهم کردن ترکیب پرانرژی ATP برای سلولها؛ و به همین دلیل است که میتوکندری را نیروگاه یا موتورخانه سلول نیز می‌نامند. بیماریهای دژنراتیو بسیار زیادی تا به امروز با نارسایی‌ها و اختلالات میتوکندری مرتبط شده‌اند. این بیماریها می‌توانند در اثر موتاسیون در DNA میتوکندری و یا DNA هسته ایجاد شوند. اولین بیماریهای میتوکندریایی که در سطح ملکولی درک شدند؛ در یک بیمار CPEO (فلج مزمن پیشرونده عضلات چشمی خارجی) و KSS (سندرمkearns-sayre) گزارش شدند. در همان زمان wallace موتاسیونی نقطه‌ای را در ژن ND6 گزارش کرد که با LHON (نوروپاتی چشمی ارثی لبر) مرتبط است. در سال 1990، دوموتاسیون جدید، یکی در ژن لایزیل- tRNA در سندرم MERRF و دیگری در ژن لوسیل - tRNA در سندرم MELAS گزارش شدند. طیف فتوتیپی بیماریهای میتوکندریایی از میوپاتی‌های نادر تا بیماریهای متعدد را شامل می‌شود. برخی موتاسیونهای mtDNA، علائم و نشانه‌های منحصر و ویژه‌ای دارند؛ مثل جهش‌های اشتباهی که موجب نوروپاتی چشمی ارثی لبر می‌شوند در حالیکه بقیه تظاهرات مولتی سیستم متنوعی را شامل می‌شوند مثل جهش‌های حذفی که موجب CPEO می‌شوند. بیماریهای میتوکندریایی بواسطه وراثت مادری، وراثت منرلی و نیز نوترکیبی‌های دوتایی نو، قادر به انتقال می‌باشند. این پیچیدگی ژنتیکی از این حقیقت ناشی می‌شود که میتوکندری از حدود 1000 ژن که در بین ژنوم میتوکندری  و هسته پخش شده‌اند، تشکیل شده است. علاوه بر این بیماریهای میتوکندریایی غالباً شروع تاخیری و یک دوره پیش رونده دارند که احتمالاً از تجمع جهش‌ های سوماتیک mtDNA در بافت‌های post-mitotic حاصل شده‌اند. این موتاسیونهای سوماتیک mtDNA همچنین در سرطان و پیری نیز نقش دارند. اگرچه بیماریهای میتوکندریایی هر ارگانی را ممکن است درگیر کنند اما این بیماریها غالباً CNS، عضلات اسکلتی، قلب، کلیه و سیستم‌های اندوکرین را تحت تاثیر قرار می‌دهند. علت این پیچیدگی‌های فتوتیپی، نقش مهم میتوکندری در انواع پروسه‌های سلولی شامل تولید انرژی سلولی بوسیله فسفریلاسیون اکیداتیو، تولید گونه‌های سمی فعال اکسیژن (ROS) بعنوان یک محصول جانبی در فسفریلاسیون اکسیداتیو و تنظیم شروع آپوپتوزاز طریق فعال شدن نفوذپذیری پورهای انتقالی میتوکندری (mtPTP) است. (19، 20 و 24)

    ساختار میتوکندری :

    میتوکندری  واجد یک غشای بیرونی و یک غشای داخلی است که دو فضای داخلی را ایجاد می‌کنند: ماتریکس داخلی و فضای بین دو غشا که بسیار باریک است. غشای داخلی چین‌خورده و تعداد زیادی کریستا ایجاد می‌کند که کل سطح آنرا بمقدار زیادی افزایش می‌دهد. سطح وسیع غشای داخلی، آنزیم‌های دستگاه مولد انرژی میتوکندریایی (زنجیره تنفسی) را در خود جای داده است. ماتریکس میتوکندری  واجد نسخه‌های یکسان متعددی از ژنوم میتوکندری، ریبوزوم‌های ویژه میتوکندری (میتوریبوزوم)، tRNAها و آنزیم‌های متنوعی است که برای بیان ژنهای میتوکندری مورد نیازند. (20)

    ژنوم میتوکندری انسان:

     حضور DNA در میتوکندری  در سال 1963 و با استفاده از میکروسکوپ الکترونی مشخص شده است. DNA میتوکندریایی انسان یک ملکول مدور بسته دو رشته‌ای با 16569 جفت نوکلئوتید است. دو رشته mtDNA که به رشته‌های H (سنگین) و L (سبک) معروفند، یک عدم تقارن غیر معمول در ترکیب بازهایشان دارند. زنجیره H غنی از پورین است در حالیکه زنجیره L غنی از پیریمیدین می‌باشد. سبک و سنگین به تحرک متفاوت رشته‌ها در گرادیانهای سزیم کلراید قلیایی اطلاق می‌شود. mtDNA انسان یکی از متراکم‌ترین و فشرده‌ترین بخش‌های اطلاعات ژنتیکی است. در mtDNA، اینترون وجود ندارد و حتی بعضی از ژنهای آن هم‌پوشانی دارند. DNA میتوکندریایی انسان واجد ژنهایی برای سیزده پروتئین (که همگی زیر واحدهای کمپلکس‌های آنزیمی زنجیره تنفسی هستند)، 22 tRNA و دو rRNA است. پلی‌پپتیدهایی که توسط mtDNA کد می‌شوند عبارتند از: هفت زیر واحد از 42 زیر واحد تشکیل‌دهنده کمپلکس I که عبارتند از: ND5, ND4 , ND3, ND­2, ND1  وND6 یک زیرواحد از یازده زیر واحد تشکیل دهنده کمپلکس III که همان cyt b است؛ سه زیر واحد از 13 زیر واحد کمپلکس IV که عبارتند از: COI (سیتوکروم c اکسیداز)، و COII ؛ دو زیر واحد از 16 زیرواحد کمپلکس V که عبارتند از: ATPase6 و ATPase8. سایر زیرواحدهای پروتئینی کمپلکس‌های زنجیره تنفسی و نیز دیگر پروتئین‌های میتوکندری، توسط ژنوم هسته کد شده و سپس به میتوکندری منتقل می‌شوند (حدود 1000 پلی‌پپتید). هر میتوکندری واجد 10-2 کپی از DNA میتوکندری است. میتوکندریها از این نظر که تحت کنترل دو سیستم ژنتیکی DNA هسته و DNA میتوکندری هستند، در بین ارگانل‌های سلولی منحصر بفردند. توالی نوکلئوتیدی mtDNA ، 6 تا 17 برابر سریعتر از توالی‌های ژنی DNA هسته‌ای باز می‌شوند؛ دلایل متعددی در این مورد ارائه شده است: میتوکندریها فاقد سیستم‌های ترمیمی DNA موجود در هسته هستند که این امر موجب کارآیی کم میتوکندریها در ترمیم آسیب DNA می‌شود؛ هیستونها در میتوکندری وجود ندارند؛ میتوکندریها بیش از 90% اکسیژنی را که به سلول وارد می‌شود، مصرف می‌کنند و بنابراین رادیکالهای آزاد اکسیژن ترجیحاً موجب آسیب DNA میتوکندری می‌شوند. میزان بالای جهش در mtDNA، موجب ایجاد RFLPهای متعدد، واریانت‌های نوکلئوتیدی ناحیه کد کننده و ناحیه کنترل کننده، واریانت‌های کنفورماسیونی و واریانت‌های طولی می‌شود. واریانت‌های پلی‌مورفیک با ریشه قومیتی و جغرافیایی نمونه‌ها مرتبطند. این مساله احتمالاً به این دلیل است که جهش‌های mtDNA در جریان پراکنده شدن اجداد مادری، هنگامی که زنان به بیرون از آفریقا و به اقلیم‌ها و قاره‌های مختلف مهاجرت کردند، انباشته شده‌اند. (16، 20 و 34)

    میتوکندریها نیمه خودمختار هستند:

    از آنجائیکه میتوکندریها قادر به همانندسازی ژنوم خود بوده و سیستم‌های همانندسازی، رونویسی و ترجمه مربوط به خود را دارا هستند؛ لذا آنها در داخل سیتوپلاسم سلول انسان مثل ارگانیسم‌های نیمه مستقل عمل می‌کنند. (20 و 34)

     

    میتوکندریها وراثت مادری دارند:

     وراثت mtDNA متفاوت از وراثت هندسی ژنهای هسته‌ای بوده و در انسان کاملاً مادری است. انتقال پدری mtDNA در مردان، حتی با استفاده از متود ICSI (تزریق داخل سیتوپلاسمی اسپرم)، نیز نشان داده نشده است. این مساله تا حدود زیادی ناشی از این حقیقت است که تخم پستاندار واجد حدود یکصد هزار میتوکندری و mtDNA است، در حالیکه اسپرم واجد حدود یکصد mtDNA است. mtDNAهای اسپرم در هنگام باروری به زایگوت داده می‌شود؛ که در پیوندهای بین گونه‌ای خاص باقی می‌ماند. با این حال در پیوندهای درون گونه‌ای میتوکندریهای اسپرم بطور انتخابی حذف می‌شوند. این حذف با این کشف که میتوکندریهای اسپرم بایوبیکوئیتین نشاندار می‌شوند، مرتبط است. احتمالاً یوبیکوئیتین میتوکندریهای اسپرم را نشانه‌گذاری می‌کند تا هنگام ورود به اووسیت تجزیه شوند. (17، 24 و 34)

    هنزوپلاسمی و تفکیک رپلیکاتیو:

     موقعی که یک جهش در mtDNA سلول رخ دهد، جمعیت مخلوطی از ملکولهای نرمال و موتانت در داخل سلول بوجود می‌آید که این پدیده را هتروپلاسمی می‌گویند. اینکه در موقع تقسیم سلول mtDNA موتانت به کدام سلول دختر منتقل شود، شانسی است. بنابراین درصد mtDNA جهش یافته در رده‌های سلولی مختلف می‌تواند به طرف موتانت خالص یا نرمال خالص (هموپلاسمی) پیش رود. این فرایند به تفکیک رپلیکاتیو معروف است. مادران با mtDNA هتروپلاسمیک نسبتهای متفاوتی از mtDNA نرمال و جهش یافته را به فرزندان منتقل می‌کنند. در اغلب اختلالات میتوکندریایی ناشی از موتاسیونهای نقطه‌ای و حذفی، مخلوطی از mtDNA وحشی و موتانت یافت می‌شود.در هیبریدهای سلولی سوماتیک بین رده های سلولهای انسانی ترانس فورمه، جهت تفکیک ظاهراً تصادفی است. با این حال اگر هیبریداسیون بین سلولهای هلا و فیبروبلاست‌های دیپلوئید و یا بین سلولهای هلا و رده‌های سلولی لنفوبلاستی باشد، mtDNAهای هلا ترجیحاً از دست می‌روند که علت این تفکیک رپلیکاتیو جهت‌دار، مشخص نیست. ممکن است این مساله از نظر کلینیکی مهم باشد چرا که گزارش شده است که در سلولهای واجد موتاسیون tRNA بیماریزای MELAS 3243 G ، mtDNAهای وحشی بطور انتخابی از بین می‌روند و mtDNAهای جهش یافته ترجیحاً باقی می‌مانند. به هر حال قوانین تعیین کننده این تفکیک جهت‌دار mtDNA و فاکتورهای موثر در آن هنوز شناخته نشده‌اند. (20، 24، 34 و 50)

    نوترکیبی mtDNA :

    از سالها قبل شواهدی مبنی بر اینکه مخلوط شدن mtDNA در داخل سلولهای سوماتیک ممکن است نوترکیبی ایجاد کند، وجود داشته است. هر چند تعداد دفعات نوترکیبی در سلولهای کشت شده پستانداران کم است، اما نوترکیبی‌های درون ملکولی ممکن است مکرراً رخ دهند . اگر یک mtDNA واجد حذف به سلول زایای موش ماده وارد شود، منجر به ایجاد استرینی از موش می‌شود که در آن فرزندان واجد mtDNA‌های نرمال و واجد حذف هستند. ملکولهای دوپلیکیت نیز افزایش می‌یابند که به نظر می‌رسد از ترکیب ملکولهای نرمال و واجد حذف بوجود آمده باشند. با این حال هیچ مشاهده‌ای مبنی بر وجود نوترکیبی در بین رده‌های مختلف mtDNA انسانی وجود ندارد. بنابراین احتمالاً در بین رده‌های mtDNA انسانی، نوترکیبی رخ نمی‌دهد. شاید علت این مساله حذف میتوکندریها و mtDNAهای اسپرم توسط اووسیت از طریق تجزیه با واسطه یوبیکوئیتین باشد. در نتیجه رده‌های مختلف mtDNA انسانی، از نظر فیزیکی جدانگه داشته می‌شوند و هرگز از نظر فیزیکی آنقدر با هم تماس ندارند که منجر به نو ترکیبی شود. (20-24)

    کامل شدن (complementation) mtDNA :

     به نظر می‌رسد که میتوکندریها و mtDNA‌های داخل یک سلول در هم ادغام می‌شوند و این ادغام موجب می‌شود تا ژنوم‌های mtDNA همدیگر را به صورت ترانس تکمیل کنند. این پدیده اولین بار با ادغام دو سلول انسانی با همدیگر و تشکیل هیبرید، نشان داده شده است. هر چند مشاهدات متعددی ادغام داخل سلولی میتوکندریها و تکمیل شدن mtDNA را تایید می‌کنند، اما تحقیقات بیشتری جهت توصیف این پدیده نیاز است.(20)

    میزان بالای موتاسیون در mtDNA :

    میزان موتاسیون mtDNA بسیار بیشتر از ژنهای هسته‌ایست. مقایسه تنوع توالی ژنهای nDNA و mtDNA که در آنزیم‌های یکسانی عمل می‌کنند، نشان می‌دهد که ژنهای mtDNA حدود 17-10 برابر سریعتر از ژنهای nDNA متحول می‌شوند. این سرعت بالای تغییر توالی ناشی از تجمع طیف وسیعی از پلی‌مورفیسم‌های توالی mtDNA، در رده‌های مختلف افراد مونث در جمعیت انسانی است. هر چند پلی مورفیسم‌های mtDNA  شایعند، اما آنها بایستی خنثی و بی‌اثر باشند تا بوسیله تغییر تدریجی ژنتیکی در جمعیت ایجاد شوند. با این حال موتاسیونها تصادفی هستند و با در نظر گرفتن اینکه اغلب نوکلئوتیدها در mtDNA عملکرد کد کننده دارند، لذا درصد بالایی از موتاسیونهای mtDNA بایستی مضر باشند. این موتاسیونها ممکن است تعویض‌های بازی یا نوآرایی باشند که در رده زایای مونث یا در تکامل اولیه ناشی از توزیع سیستمیک یا بیماری اتفاق می‌افتد آنها ممکن است در طول زندگی در بافت‌های بدن ایجاد شده و بصورت گروهی از موتاسیونهای هتروژن در بافت‌های post-mitotic ، تجمع یابند. این موتاسیونها اساس ملکولی بالا بودن فراوانی بیماریهای mtDNA است که در کلینیک آنها را مشاهده می‌کنیم. (20، 24، 34 و 39)

    تنوع پلی مورفیک mtDNA در جمعیت‌های انسانی:

    از آنجاییکه mtDNA کاملاً به صورت مادری به ارث می‌رسد بنابراین توالی mtDNA تنها بوسیله تجمع تعویض‌های بازی در جریان پراکندگی رده‌های مادری دچار تغییر و تحول می‌شود. این بدان معناست که تغییرات mtDNA بایستی با مبدا جغرافیایی افراد، مطابقت داشته باشد. این مساله اثبات شده است چرا که آفریقایی‌ها، آسیایی‌ها و اروپایی‌ها هر کدام (HpaI mtDNA RSPs) HpaI mtDNARestriction sitepolymor phisms  پلی‌مورفیسم mtDNA ناشی از برش توسط HpaI) مجزای مخصوص قاره‌ای دارند. تحقیقات بیشتر بر روی RSPها، نشان داده‌اند که تمامی انواع mtDNA به یک درخت با تنوع بسیار زیاد mtDNA متعلقند، که ریشه این درخت در آفریقاست و شاخه‌های آن به قاره‌های مختلف پراکنده شده‌اند. تنوع توالی که در یک mtDNA خاص یافت می‌شود، هاپلوتیپ mtDNA و یک گروه از هاپلوتیپ‌های مرتبط با هم، هاپلوگروپ نامیده می‌شوند. هاپلوگروپ‌ها بوسیله پلی مورفیسم‌های توالی قدیمی که ناشی از پراکندگی یک شاخه خاص از درخت mtDNA است تعریف می‌شوند. ساختار و پراکندگی درخت mtDNA در دو مطالعه توالی‌های کامل mtDNA که مبدا آفریقایی mtDNA و شاخه‌های قاره‌ای به ترتیب از آفریقا به آسیا و به اروپا را به وجود آورده و مشخص کرده است، ایجاد شده است. (شکل 1)

    مطالعات مخصوص قاره‌ای نشان داده‌اند که mtDNAهای آفریقا، پرتنوع‌ترین و بنابراین قدیمی‌ترین بوده‌اند. 150000 YBP(years before present)]؛ حدود 150 هزار سال قبل[. MtDNA‌های آفریقا واجد یک جایگاه DdeI در موقعیت 10394 بوده و درسه‌هاپلو گروه اصلی طبقه‌بندی می‌شوند: L1 (قدیمی‌ترین)، L2 و L3 (جوانترین). L1 و L2 حدود 76% کل mtDNA‌های آفریقایی را در بر می‌گیرند و با داشتن یک جایگاه برش HPAI در موقعیت 3592 تعریف می‌شوند. جنوب آفریقا و قسمت مرکزی غرب آفریقا در گروه L1 متمرکز شده‌اند و نزدیکترین به ریشه درخت انسانی هستند. در حالیکه ماکروهاپلوگروه M آسیایی و ماکروهاپلو گروه N اوراسیایی از L3 منشا گرفته و همه mtDNA‌های اوراسیایی را به وجود آورده‌اند. MtDNAهای آسیابی، YBP 70000-50000، از mtDNAهای Lآفریقایی ایجاد شده‌اند و به دو ماکروها پلوگروپ اصلی N (که جایگاه DdeI در موقعیت 10394 را از دست داده) و M (که یک جایگاه AluI در موقعیت 10397 به دست آورده است)، تقسیم می‌شوند. بنابراین گروه N، 10394 منفی و 10397 منفی است (-/-) در حالیکه M، (+/+) است. از ماکروهاپلوگروه N، گروهی از هاپلوگروههای آسیایی شامل Y, F,B,A و از M، هاپلوگروههای G,E,D,C و Z منشا می‌گیرند. mtDNAهای اروپایی از L3 و N ایجاد شده‌اند. آنهایی که جایگاه برش DdeI در موقعیت 10394 دارند شامل هاپلوگروه‌های H (حدود 45%)، W,V,U,Tو X (2%) هستند. آنهایی که فاقد جایگاه مذکور هستند، عبارتند از: هاپلوگروههای J,I (9%) و .K mtDNA های اروپایی حدود YBP 50000-40000 از آفریقاییها مشتق شده‌اند (شکل 1) هنگامی که آسیاییها به شمال (سیبری) مهاجرت کردند، میزان تنوع mtDNA، بعلت تغییر تدریجی ژنتیکی کاهش پیدا کرد. در نهایت mtDNAهای سیبری به هاپلوگروههای Y,G,D,C,A و Z تقلیل یافت. گروههای C,A و D حدود YBP 30000-20000 از سیبری به پل برینگ لند مهاجرت کرده و باعث بوجود آمدن هنری‌های پالئو شدند. مهاجرت بعدی‌ هاپلوگروه B را که با حذف 9 جفت باز در موقعیت 8281-8271 مشخص می‌شود، به آمریکا آورد که در آنجا این گروه با گروه‌های D,A و C مخلوط شد. مهاجرت‌های بعدی از Chukotka با حمل یک گروه A تغییر یافته، جمعیت‌های Na-Dene را حدود yBP 9500-7000، بوجود آورد. مهاجرت‌های بعدی از Chukotka، هاپلوتیپ‌های A و D تغییر یافته را آورد که موجب بوجود آمدن اسکیموها و Aleutها شدند. بایستی عنوان کنیم که آنالیز تغییرات کروموزوم Y در سیبریایی‌ها و اهالی بومی آمریکا، الگوهای مهاجرت مشابهی را نشان داده است. علاوه بر هاپلوگروههای C,B,A و D آسیایی، 25% mtDNAهای Great lakes Ojibwa، متعلق به هاپلوگروه X اروپایی است. با این حال mtDNAهای هاپلوگروه X اهالی بومی آمریکا، حدود YBP 15000 از مشابه‌های اروپایی ایجاد شده است. بنابراین آنها همچنین ممکن است، نشاندهنده یک مهاجرت اروپایی قدیمی به دنیای جدید باشند. (16، 17، 20، 39 و 49)

    ژنتیک میتوکندریایی:

    (شکل در فایل اصلی موجود است)

    شکل 1

    همانند سازی mtDNA:

    mtDNA انسان یک ناحیه آغاز همانند‌سازی دارد که از نظر فیزیکی به دو قسمت که هر کدام سنتز یکی از رشته‌های DNA دختر را کنترل می‌کند، تقسیم شده است. ناحیه آغاز همانند سازی زنجیره (Heavy)H یا OH در بالای دایره و در موقعیت 200 در داخل 1123 جفت باز ناحیه کنترل در بین دو ژن P یا پرولین tRNA (در موقعیت 16023) و F یا فنیل آلانین tRNA (در موقعیت 577) قرار گرفته  است. (شکل 2)

    (شکل در فایل اصلی موجود است)

     

    ناحیه شروع همانند سازی زنجیره سبک (OL)، در طرف دیگر رنوم در درون یک دسته حاوی پنچ ژن tRNA (WANCY) و در موقعیت 5750 قرار گرفته است.

    5511  NAW   ‎‎y C  5904  

    ناحیه شروع همانند سازی زنجیره‌  استفاده سنگین ()، رونویسی لازم است. همانندسازیmtDNA در و با استفاده از یکRNA پرایمر که از رونوشت زنجیره‌L ایجاد شده است، آغاز شده است، آغاز می‌شود. رونویسی زنجیره‌L در مجاورت راه انداز زنجیره‌ L  (‍PL ) آغاز می‌شود.PL  و PH که به ترتیب پروموتورهای زنجیره‌هایL  و H هستند نیز مثل در همان ناحیه کنترل 1123 جفت بازی است. PL در فرودست OH و‍‍PH در فرودست PL  واقع شده است. سپس این رونوشت در محل نوکلئوتیدهایG در توالی های حفاظت شده CSBI، CSBII و CSBIII (Conserved sequence blocks)، توسط یک RNase که بوسیله هسته کد می‌شود، می‌شکند. DNA پلیمر از (گاما) حاصله بعنوان یک پرایمر جهت سنتز یک ملکول 7SDNA استفاده می‌کند. این 7SDNA در توالی TAS یا (Termination associated sequence) در انتها ناحیه کنترل، پایان می‌یابد. توالیTAS به فاکتور خاصی متصل  می‌شود که احتمالاً تنظیم کننده این جایگاه همانندسازی است. این ناحیه تازه سنتز شده زنجیره‌H، جایگزین زنجیره H والدشده و موجب تشکیل لوپ جایگزینی (D– Loop) می‌شود. سپس 7SDNA بعنوان پرایمری جهت سنتز یک زنجیره H جدید مورد استفاده قرار می‌گیرد. سنتز زنجیرهH با جایگزینی آن بجای زنجیرهHوالدی، تا محل OL  (Light strand origin)، که  mtDNA را شامل می‌شود، پیش می‌رود. بمحض اینکه OL با زنجیرهH جایگزین مواجه می‌شود به صورت یک ساختار ریشه – ساقه (Loop – stem) در آمده (فولدینگ می‌یابد) و سنتز زنجیره L آغاز شده و در جهت مخالف زنجیرهH الگو پیش می‌رود. در واقع همانندسازی زنجیرهH درجهت حرکت عقربه‌های ساعت و همانند سازی زنجیره‌ سبک در جهت عکس حرکت عقربه‌های ساعت پیش می‌رود. تفاوت دیگر همانند سازی رشته سبک با زنجیرهH در این است که همانند سازی زنجیرهL نیازی بهRNA پرایمر ندارد. بنابراین همانند سازی mtDNA دوجهتی اما غیر همزمان است.

    (شکل در فایل اصلی موجود است)

    شکل 2

     

     

    شکل2؛ نقشه mtDNA انسان: mtDNA واجد16569 جفت نوکلئوتید است
    (nPS 16569) که شماره‌گذاری تقریبا از محلOH شروع و در جهت عکس حرکت عقربه‌های ساعت در حول نقشه کروی پیش می‌رود. عمل هر ژن با توجه با سایه‌هایی که وجود دارند برحسب نشانهای داخل دایره، مشخص است. اولین وآخرین نوکلئوتید ژنهای 7 rRNA و mRNA  در قسمت خارج آمده است. ژنهایtRNA با حرف آمینو اسید مربوطه نشان داده شده‌اند.

     

    رونویسی MtDNA  : تمامی 37 ژنی که توسط mtDNA انسان کد می شود، در ابتدا به صورت دو رونوشت پیش ساز چند ژنی بسیار بزرگ ساخته می‌شوند که یکی از این پیش سازها توسط زنجیره سبک و دیگری توسط زنجیره‌ سنگین کد می‌شود.

    رونویسی mtDNA از دوراه انداز‍PL  و PH (یکی برای هر زنجیره) واقع در ناحیه کنترل آغاز می‌شود. PH  (راه انداز زنجیره سنگین) مسؤل رونویسی27 ژن است که عبارتند از: دوژن rRNA ، 13 ژن tRNA و 12ژن کد کننده ‌ پروتئین. PL مسئول رونویسی ژن پروتئین ND6، 27 ژن توسط زنجیره‌سنگین و تنها 10 ژن توسط زنجیره سبک کد می‌شود. هر دوراه از طریق یک جایگاه اتصال ، با یک فاکتور رونویسی میتوکندریایی یا Tfam (Transcripion factor associated mitochondra ) که توسط هسته کد می‌شود مرتبطند.Tfam یک پروتئین متصل شونده به DNA با دو دومین اتصال یابنده بهDNA است که دم C  - ترمینال آن جهت رونویسی ضروری است. Tfam با افنیته بالایی به PL  (در مقایسه با  PH) متصل می‌شود که این مسأله با فراوانی نسبی  رونویسی آنها، سازگار است. رونویسی از هردوراه انداز در حول mtDNA کروی پیش می‌رود و یکRNA پلی سیسترونیک را بوجود می‌آورد. سپس ژنهایtRNA که بین توالیهایrRNA و mRNA قرار گرفته‌اند، در داخل رونوشت fold شده و با فعالیت یک RNas خارج می‌شوند.  mRNA ها و rRNA های آزاد پس از رونویسی پلی‌آدنیله می‌شوند (polyadenylation post – transcription) و tRNA ها تغییر یافته و CCA انتهای 3 به آنها اضافه می‌شود. همچنین علاوه بر رونوشت چندژنی طویل 6/16 کیلوبازی که راه‌انداز زنجیره H ایجاد و تمامی ژنهای زنجیره سنگین را شامل می‌شود ، یک رونوشت کوتاه 3 کیلوبازی نیز از این راه انداز ساخته می‌شود. این رونوشت که تنها دوژن rRNA و tRNAهای کنار آنرا شامل می‌شود، تقریباً 25 برابر بیشتر ازرونوشت طویل ساخته می‌‌شود و بنابراین ساخته شدن مقادیر کافیsrRNA12 و srRNA 16 را برای تمامی ریبوزوم‌ها که به منظور ترجمه به آن نیازمندند، ممکن می‌سازد.

    ترجمهmtDNA:

     

    mRNAهای DNA میتوکندری برروی ریبوزوم‌های میتوکندریایی (میتوریبوزوم‌ها)
     S 55 که از زیرواحد بزرگ S39 و یک زیر واحد کوچکS 28 تشکیل شده‌اند، ترجمه می‌شوند. این ریبوزوم‌ها برخلاف ریبوزو‌م‌های باکتریایی و یوکاریوتی، rRNA کم و پروتئین‌های ریبوزومی زیادی دارند.mRNAهای tDNA، فاقد توالی شاین‌دالگارنو برای اتصال ریبوزوم بوده و عموما ترجمه در کدون آغازین در انتهای َ5 شورع می‌شود. تصور می شود که ترجمه با اتصال زیر واحد کوچک ریبوزوم به یک ناحیه 40 بازی ازmRNA آغاز می‌‌شود. سپس ریبوزوم به انتهای 5 حرکت می‌کند تا ترجمه را آغاز کند. نشان داده شده است که پیچش mRNA  به دور ریبوزوم، تشکیل پلی‌زوم را محدود می‌کند. میتوریبوزوم‌ها نسبت به کلرا مفنیکل (CAP) که مهارکننده ریبوزوم باکتری است، حساسند درحالیکه نسبت به سیلکوهزامید و امتین (emetine) که مهارکننده ‌ ریبوزوم S80 سیتوزولی (یوکاریوتی) است؛ مقاومند. آنها همچنین به آمینو گلیکوزید آنتی‌بیوتیک‌ها مثل استرپتومایسین و جنتامایسین نیز تا حدودی غیرحساسند. علاوه بر این کد ژنتیکی ترجمه mtDNA نیز متفاوت از کد ژنتیکی عمومی است. در mtDNA پستانداران، UGA بجای اینکه کدون خاتمه باشد، Trp را کد می‌کند.AuA  بجای Ile ، Met را کد می‌کند وAGA و AGG، بجای اینکه Arg را کد کنند، کدونهای خاتمه هستند. تنها 22 tRNA برای ترجمه توالیهای کدکننده پروتئین‌ ژنوم میتوکندری انسان کافی است. علت این امر سادگی جفت‌شدن کدون – آنتی‌کدون در میتوکندری نسبت به کدژنتیکی عمومی است. یک متیونیلtRNA در mtDNA انسان وجود دارد که هم برای Met و هم برای –n فورمیل متیونین اختصاصی است. مثل پروکاریوتها، n – فورمیلMet بعنوان آمینواسید آغازگر جایگزینMet می‌شود. علاوه براین گاهی کدونهایAuA یا Auu بجایAuG، بعنوان کدونهای شروع استفاده می‌شوند. هرچند اجزایRNA یی دستگاه ترجمه، توسط mtDNA کد می‌شوند، ژنهای کد کننده ‌فاکتورهای پروتئینی دخیل در ترجمه درهسته کد می‌شوند. این پروتئین‌ها عبارتند از: آمینواسیل tRNA سنتتاز، پروتئین‌های ریبوزومی، فاکتورهای طویل کننده و خاتمه دهنده و …

     

    فرایندهای میتوکندریابی:

     

    تولید انرژی، ایجادRoS و آپوتیوز فسفرپلاسیون اکسیداتیواز از پنج کمپلکس آنزیمی چندین زیرواحدی تشکیل شده است. کمپلکسI یا NADH دهید روژناز یا NADH: بیبیکینول اکسیدو دوکتاز، کمپلکسIV یا سوکسینات دهیدروژناز یا سوکسینات: یوبیکنیون اکسیورموکتاز، کمپلکسIII  یاCytc دوکتاز یا یوبیکنیول: cytc رموکتاز و کمپلکس IV یا Cyte اکسیداز یا فروCytc: اکسیژن اکسیدوردوکتاز؛ زنجیره انتقال الکترون یا ETC را تشکیل می‌دهند درحالیکه کمپلکسV، ATP سنتاز است. که بوهیدراتها و چربی‌های غذایی به میتوکندری منتقل شده و به ترتیب توسط سیکل TCA و اکسیداسیون اکسید می‌شوند. طی این فرایندCo2 و اتم‌های هیدروژن آزاد می‌شود که اتم‌های هیدروژن به NDA+ محلول منتقل شده وH+ و NADH ایجاد می‌کند ویا بهFAD متصل به آنزیم‌ها منتقل شده وFADH2 ایجاد می کند. NADH,H+توسط کمپلکس I اکسیده شده و الکترونها از طریقFMN و چندین مرکز آهن – گوگرد انتقال پیدا می‌کنند تا اینکه به یوبیکینون (CO Q10 ) برسند. متعاقباً کوآنزیمQ یا یوبیکینون به یوبیسمیکینون (Co Q10H) و سپس به یوبیکینول
    (Co Q10 H2) احیا می‌شود. Q10 Co همچنین بوسیله سوکسینات توسط کمپلکس II و الکترون‌های حاصل از اکسیداسیون اسیدهای چرب ازطریق فلاو وپروتئین منتقل کننده و الکترون (ETF) توسطETF دهیدروژناز نیز به یوبیکینول تبدیل می شود. هم سوکسینات دهیدروژناز و هم ETF دهیدروژناز واجدیک FAD و یک یا چند مرکز آهن – گوگرد هستند. یوبیکینول الکترونها را از طریق غشای داخلی به کمپلکس IV منتقل می‌کند. درداخل این کمپلکس الکترونها از طریق کوآنزیمQ، سیتوکرومb، سیتوکرومC1 و اجزاء آهن گوگرد حرکت می‌کنند. سپس الکترونها از کمپلکس III به  سیتوکروم C منتقل می‌شوند. سیتوکرومC به طور سستی با قسمت خارجی غشای درونی مرتبط است. CytC الکترونها را به کمپلکس III منتقل می‌کند. درداخل  این کمپلکس الکترونها از طریق مراکز مسA و مس B و سیتوکروم‌های a  وa3 منتقل شده و در نهایت با اکسیژن متصل و آب ایجاد می‌کند. انرژیی که در این اکسیداسیون کنترل شده الکترونها آزاد می‌شود، صرف پمپ‌کردن پروتونها از طریق کمپلکس‌‌های I، III و IV ،  از داخل ماتریکس میتوکندری به فضای بین دوغشا (inter membrane space) می‌شود. گرادیان الکتروشیمیایی () حاصله که شامل اختلافات pH ی وپتانسیل الکترواستاتیکی  است، بعنوان منبع انرژی پتانسیل جهت سنتزATP عمل می کند. ATP توسط کمپلکس V یا ATP سنتاز یا ATP عمل می کند. ATP فسفوهیدرولاز ساخته می‌شود. این کمپلکس شامل سه جزء مجزا است: قسمت پایه یا F0 ، قسکت استالک یا ساقه و سرهگزاگونال یاF1 . همچنانکه پروتونها از طریق کانال پروتون درF0، برمی‌گردند، موجب چرخش محور مرکزیATP  سنتاز (ATPsyn) در درون آرایشی هگذاگونال زیر واحدهای و  شده و درنتیجه موجب تغییر کنفورماسیون (آرایش فضایی) آنها می‌شوند. این امر موجب اتصال ADP و Pi  و تشکیل ATP و
    آزاد شدن آن به ماتریکس می‌شود. ATP ماتریکس بوسیله ANT
    (Adenine nucleotide translocator) با ADP سیتوزولی معاوضه می‌شود. شکل 3 (دیاگرام یک میتوکندری: این دیاگرام ارتباطات بین فسفریلاسیون اکسیداتیو میتوکندریایی و الف) تولید انرژی (ATP) ، ب) تولید گونه‌های فعال اکسیژن (ROS) و ج) شروع آپوپتوز از طریق فعال شدن (mitochondrial Permeability  transitio npore) یا mtpTp را نشان می‌دهد. کمپلکس‌های آنزیمی تنفسی دخیل در فسفریلا پلاسیون اکسیداتیو عبارتند از: کمپلکس I، II، III، IV و کمپلکس V. پیروات حاصل از گلوکز وارد میتوکندری شده و از طریق پیروات دهیدروژناز، تولید استیل کوآ می‌کند که این ملکول با ترکیب شدن با اگزالواستات وارد سیکل کربن می‌شود. مولکولهای کوچک از طریق کانالهای یونی وابسته به ولتاژ (Voltage  dependent anionchannels) یا VDAC یا پورین از غشای بیرونی انتشار می‌یابند. به نظر می‌رسد که VDAC ها به همراه ANT ، Bax وسیکلوفیلین D (CD)، در غشای داخلی و خارجی میتوکندری گردهم آمده و mt pTp را تشکیل می‌دهند. Bax (Bcl- 2 associated xprotein) یک پروتئین پروآپوپتوتیک است و به نظر می‌‌رسد که با آنتی آپوپتوتیک پروتئینBcl2 و گیرنده بنزودیازپین (BD) واکنش می‌دهد. باز شدن mtpTp با آزاد شدن Cytc، فاکتور شروع آپوپتوز (AIF)، DNase فعال شده توسط کاسپاز (CAD) و پروکاسپازهای 2، 3 و 9 مرتبط است. در سیتوزول سیتوزول سیتوکروم C، Apaf-1 را فعال می‌کند که این ملکول پروکاسپازهای 2 و 9 را فعال می‌کند. کاسپازهای فعال شده، کاسپازهای 3، 6 ، 7 وCAD  را فعال می‌کنند. کاسپازها سیتوپلاسم‌ را تخریب می‌کنند در حالیکهA I F و CAD به هسته مهاجرت کرده و کروماتین را نابود می‌کنند.)
    (شکل در فایل اصلی موجود است)

     

    شکل 3

    B Cl –2}  یک انکوژن در کروموزوم 18 انسان است که بیشتر موجب از بین رفتن و توقف مرگ سلولی می شود تا افزایش تقسیم سلولی (مکانیسم آنتی آپوپتوتیکیBcl2). Bax موجب مرگ سول درحالیکه Bcl2 موجب زنده ماندن سلول می شود. در واقع موقعی که دیمرهای Bcl2 زیاد باشند سلول می‌میرد. هترودایمر Bcl2/Bax نیز مثل همودایمرBax، موجب تنظیم مرگ سولی می‌شود. BCl2 برای اعمال اثرش بایستی به Bax متصل شود. در واقع بخش فعال مهارکننده مرگ سلول هترودایمر Bcl –2 / BaX است و نه همودایمر Bcl-2 / Bcl- 2  }

    هر یک از کمپلکسهای زنجیره تنفسی ناقلین الکترون متعددی را در خود جای داده‌اند. کمپلکس‌ I، II و III شامل مراکز متعدد آهن – گوگرد هستند. کمپلکس‌های III و IV شامل سیتوکرومها هستند. از آنجاییکه زنجیره انتقال الکترون از طریق  (پتانسیل الکترواستاتیک) با سنتزATP توأم می‌شود، مصرف اکسیژن میتوکندری به وسیله غلظت ADP ماتریکس تنظیم می‌شود. در غیابADP، مصرف اکسیژن آهسته است (حالتIV تنفس). هنگامی که ADP اضافه می‌شود، توسط ANT به ماتریکس منتقل می‌شود و مصرف اکسیژن افزایش می‌یابد چرا که ATP سنتاز از گرادیان پروتون جهت فسفریلاسیون ADP استفاده کرده و ATP ایجاد می‌کند (حالتIII تنفس). نسبت حالتIII به IV تنفس، نسبت کنترل تنفسی یا control Ratio Respiratory (RCR) نامیده می‌شود و میزان اکسیژن مصرفی نسبت بهADP فسفریله شده، نسبت P /O نامیده می‌شود.

    میتوکندری همچنین منبع اولیه گونه های فعال اکسیژن اندوژن است. اولین گونه فعال اکسیژن یا آنیون سوپراکسید ()، با انتقال الکترون از زنجیره انتقال الکترون به تشکیل می‌شود. (شکل 3)

  • فهرست و منابع تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری

    فهرست:

    مقدمه .........................................................................................................................................................

    ساختار میتوکندری ..............................................................................................................................

    ژنوم میتوکندری انسان .......................................................................................................................

    میتوکندریها نیمه خود مختار هستند ...........................................................................................

    میتوکندریها وراثت مادری دارند ....................................................................................................

    هتروپلاسمی و تفکیک رپلیکاتیو ....................................................................................................

    نوترکیبی mtDNA .............................................................................................................................

    کامل شدن mtDNA .........................................................................................................................

    میزان بالای موتاسیون در mtDNA ............................................................................................

    تنوع پلی مورفیک mtDNA در جمعیت‌های انسانی ...........................................................

    ژنتیک میتوکندری (همانندسازی، رونویسی و ترجمه mtDNA)..................................

    فرایندهای میتوکندریایی ...................................................................................................................

    میتوکندری و پاسخ به استرس .......................................................................................................

    بیان آستانه‌ای ..........................................................................................................................................

    بیماریهای میتوکندریایی ناشی از جهش‌های سیستمیک ..................................................

    LHON (نوروپاتی چشمی ارثی لبر) ...........................................................................................

    مکانیسم‌های پاتوفیزیولوژیکی احتمالی LHON ....................................................................

    LHON، مولتیپل اسکلروزیس و دیستونی ...............................................................................

    بیماری پارکینسون (PD) و بیماری هانتینگتون (HD)........................................................

    ژنتیک کروموزومی بیماری پارکینسون.........................................................................................

    جهش‌های mtDNA در PD...........................................................................................................

    اختلالات میتوکندریایی در PD.......................................................................................................

    نارسایی‌های میتوکندریایی در بیماری‌ هانتینگتون ................................................................

    رتینیت پیگمنتوزا (RP) و سندرم لی (LS)...............................................................................

    موتاسیونهای mtDNA در RP و سندرم لی............................................................................

    میوپاتی و انسفالومیوپاتی‌های میتوکندریایی ............................................................................

    ضعف عضلانی پیشرونده و مرتبط پاموتاسیونهای سیتوکروم mtDNA b .................

    انسفالومیوپاتی‌های ناشی از جهش‌های ژن COX mtDNA .........................................

    میوپاتی‌های میتوکندریایی ناشی از موناسیونهای TRNA ژنوم میتوکندری ...........

    کاردیو میوپاتی‌‌هایپرتروفیک و میوپاتی ناشی از جهش‌های mtDNA .......................

    انسفالومیوپاتی‌های ناشی از جهش‌های mtDNA ................................................................

    افتالموپلژیا، پتوزیس و میوپاتی میتوکندریایی ........................................................................

    افتالموپلژیای ناشی از جهش‌های mtDNA ............................................................................

    CPEO و KSS مرتبط با موتاسیونهای نوآرایی mtDNA ..............................................

    CPEO ناشی از موتاسیونهای تعویض باز mtDNA ...........................................................

    سندرم مغز استخوانی پانکراسی پیرسون ....................................................................................

    دیابت ملیتوس ........................................................................................................................................

    تیپ II دیابت ملیتوس بوسیله نوآرایی‌های (حذف‌ها و دوپلیکاسیونها) mtDNA

    ایجاد می‌شود............................................................................................................................................

    دیابت تیپ II ناشی از موتاسیونهای تعویض باز mtDNA ................................................

    میوپاتی و دیابت .....................................................................................................................................

    پاتوفیزیولوژی دیابت و کری .............................................................................................................

    کری به ارث رسیده از مادر و یا کری القا شده توسط آمینوگلیکوزید...........................

    دمانس بعنوان یک بیماری میتوکندریایی ..................................................................................

    بیولوژی و ژنتیک بیماری آلزایمر ....................................................................................................

    اختلالات میتوکندریایی در AD......................................................................................................

    بیماری آلزایمر ناشی از جهش‌های mtDNA .........................................................................

    دیس کندروپلاژی متافیزی یا هیپوپلازی مویی- غضروفی ناشی از جهش‌های

    RNASE MRP....................................................................................................................................

    بیماریهای مولتی فاکتوریال و mtDNA ....................................................................................

    جهش‌های سوماتیک mtDNA در بیماریهای دژنراتیو، سرطان و پیری ....................

    تجمع جهش‌های سوماتیک mtDNA مرتبط با سن ...........................................................

    آنمی سیدروبلاستیک ایدیوپاتیک ..................................................................................................

    بیماری ایسکمی قلبی و کاردیومیوپاتی اتساعی ......................................................................

    بیماریهای نورودژنراتیو؛ HD, PD و AD...................................................................................

    بیماری پارکینسون و بیماری‌ هانتینگتون ...................................................................................

    بیماری آلزایمر .........................................................................................................................................

    موتاسیونهای سوماتیک mtDNA در دیگر بیماریهای کمپلکس ...................................

    موتاسیونهای سوماتیک در سرطان ................................................................................................

    نتیجه‌گیری ...............................................................................................................................................

    منابع ............................................................................................................................................................

     

    منبع:

    Allen J.C., Midhailovskay I.E., Sukernik R.I., Wallace D.C.; The role of mtDNA background in disease expression: a new primary LHON mutation associated with western eurasian haplogroup J. Hum Genet; 2002; 110(2): 130-138.

    Alcolado J.C., thomas A.W.; Maternally inherited diabetes mellitus: the role of mitochondrial DNA defects. Diabet Med; 1995;12:102-108.

    Brown M.D., Voljavec A.S., latt M.T., Wallace D.C.; Leber’s hereditary optic neuropathy: A model for mitochondrial neurodegenerative disease. FASEB.J; 1992b; 6: 2791-2799.

    Bianca J.C., Rene F.M., Jeroen G., Marianne d.,Hubert J.;Mutation analysis of the entire mitochondrial genome using denaturing high performance liquid chromatography. Nucleic Acids Research; 2000; Vol. 28; No.20 : 89.

    Bruno C.,Martinuzzi A., Tang y.;A stop-codon mutation in the human mtDNA cytochromeC oxidaseI gene disrupts the functional struture of complex IV. Am.J. Hum. Genet.; 1999; 65:611-620.

    Brown M.D., Wallace D.C.; Molecular basis of mtDNA disease. J.Bioenerg. Biomembr; 1994a; 26: 273-289.

    Brown M.D., Shoffner J.M., Kim Y.L.; Mitochondrial DNA sequeca analysis of four Alzheimer’s and parkinson’s disease patients. Am.J. Hum. Genet; 1996; 61: 283-289.

    Bindoff L.A., Brich M.,parker W.D., Tunbull D.M.; Mitochondrial function in parkinson’s disease. Lancet; 1989;2:49.

    Brockington M.,Alsanjari N.,Sweeny M.G.,Harding A.E.; kearns-sayre syndrome associated with mitochondrial DNA deletion or duplication:A molecular genetic and pathological study. J.Neurol. sci; 1995; 131: 78-87.

    Brennan W.A., Bird E.D., Aprille J.R.; Regional mitochondrial respiratory activity in Huntington’s disease brain. J.Neurochem.; 1985;44: 1948-1950.

    Bindoff L.R., Howell N.,Poulton J.; Abnormal RNA processing associated With a novel tRNA mutation in mitochondrial DNA:A potential disease mechanism. J.Biol. chem.; 1993;268 : 19559-564.

    Blin O.,Desnuelle C., Rascol O.; Mitochondrial respiratory failure in skeletal muscle from patients with parkinson’s disease and multiple system atrophy. J. Neurol. Sci.; 1994; 125:95-101.

    Bofol D., Scacco S.C., Solarino G., Papa s.; Decline with age of the respiratory chain activity in human skeletal muscle. Biochim.Biophys. Acta.; 1994; 1226:73-82.

    Bonilla E., Tanji K., Hirano M., Vu t.H., Dimauro s., schon E.A.; Mitocondrial involvement in Alzheimer’s disease. Biochim. Biophys. Acta; 1999; 1410:171-182.

    Boulet L., karpati G., shoubridge E.A.; Distribution an thre shold expression of the tRNALys mutation in skeletal muscle of patients with myoclonic epilepsy and ragged- red fibers (MERRF). Am.j.Hum. Genet.; 1992; 51 :1187-1200.

    Cann R.L., stoneking M., Wilson A.c.; Mitochondrial DNA and Human evolution. Nature; 1987;325:31-36.

    Case J.T.,Wallace D.C.; Maternal inheritance of mitochondrial DNA polymorphisms in cultured human fibroblasts. Somatic Cell Genetic; 1981;7:103-108.

    Carelli V.,Ghelli A.,RattaM.; Leber’s hereditary optic neuropathy: Biochemical effect of 11778/ND4 and 3460/ND1  mutations and correlation with the mitochondrialgenotype. Neurology; 1997; 48:1623-1632.

    Chinnery P.F., Turnbull D.M.; Mitochondrial DNA disease. Lancet; 1999 ; 354: 17-21.

    David L.R imoin, Michael C.,Reed E.; EMERY and RIMOIN’S principles and practice of Medical Genetics. Fourth edition;2001.

    Dumoulin R.,Lopez R.F., Barker W.W.; Anovel gly 290 asp mitochondrial cytb mutation linked to a complex III deficieny in proressive exercise intolerance. Molecular and cellular probes; 1996 ; 10:389-391.

    Enriguez J.E., chomy A., and Attardi G.; MtDNA mutation in MERRF syndrome causes defective aminoacylation of tRNALys and premature translation termination. Nature. Genet.;1995; 10:
    47-55.

    Francesca O., Michele R., Anna M., Pietro T., Gabriella S.; Pathogenic role of mtDNA duplications in mitochondrial disease associated with mtDNA deletions. American Journal of Medical Genetics; 2003;118(3): 247-254.

    Houshmand M.;Mitochondrial DNA mutations, pathogenicity and inheritance. Iranian Journal of Biotechnology; 2003; vol.1; No.1.

    Herman A.C., Benttage and Giuseppe Attaydi; Relationship of genotype to phenotype in fibroblast-derived transmitochondrial cell lines carrying the 3243 mutation associated with the MELAS encephalomyopathy: shift towords mutamt genotype and role of mtDNA copy number. Human Molecular Genetics; 1996 ; 5(2):197-205.

    Josep L.; Pathology of the mitochondrion. Autonomous university of Barcelona, Barcelona, spain; 2003.

    Johns D.R.,Neufeld M.J., porrk R.D.; An ND  mitochondrial DNA mutation associated with leber hereditary optic neuropathy. Biochem. Biophys. Res. Commun.; 1992a; 187:1551-1557.

    Kadowaki T., Sakura H., Otabe S.; Asubtype of  diabetes mellitus associated with a mutation in the mitochondrial gene.  Muscle and Nerve; 1995;3:137-141.

    Kanamori A., Tanaka K., Umezava S.; Insuline resistance in mitochondrial gene mutation. Diabetes care; 1994; 17: 778-779.

    King M.P., Koga Y.,Davidson M.,Schon E.A.; Defects in mitochondrial protein syntesis and respiratory chain activity segregate with the tRNALeu(uuR) mutation associatod with mitochondrial myopathy, encephalopathy, Lactic acidosis, and strock like episodes. Mol. Cell. Biol.; 1992; 12:480-490.

    Lu C.Y., Lee H.C.,Fahn H.J., Wei Y.H.; Oxidative damage elicited by imbalance of free redical scavenging. Enzymes is associated with large- scale mtDNA deletions in aging human skin- skin. Mutat,Res.; 1999; 25(2):11-21.

    Lenaz G.; Role of mitochondria in oxidative stress and aging Biochim. Biophys. Acta.; 1998; 1366: 53-67.

    Lee H.C., wei Y.H.; Mutation and oxidative damage of mtDNA and defective turnover of mitochondria in human aging. J.Formos. Med.Assoc.; 1997; 96:770-800.

    Lois A.,Tully C., Barbara C., Levin; Human mitochondrial Genetics. Biotechnology and Genetic Engineering Reviews; 2000; Vol.17.

    Lee H.C., Wei Y.H.; Mitochondrial alterations, cellular response to oxidative stress and defective degradation ot proteins in aging. Biogerontology; 2001; 2(4): 231-240.

    Myabayashi S.,Nakamura R., Tada K.; Defects of mitochondrial respiratory enzymesincloned cells from MELAS fibroblasts. J. Inher. Metab. Dis.; 1992;15:797-802.

    MtDNA in aging, cancer and mitochondrial disease. Innovita Research Fundation; 2003.

    MtDNA change during aging. Innovita ,Research Fundation; 2003.

    Rew D.A.; Mitochondrial DNA , human evolution and the cancer genotypo. EJSO; 2001; 27:209-211.

    Rew D-A.; Tahe evolutionary biology of aging, death and human malignancy. Eur.J.Surg. Oncol.; 1998;24:568-72.

    Richardson A.; Increased oxidative damage is correlated to alterd mitochondrial function in heterozygous manganese superoxide dismutase knockout mice. J.Biol. chem.; 1998; 237: 28510-28515.

    Schon E.A., Hirano M., Dimauro S.; Mitochondrial encepha lomyopathies: clinical and Molecular analysis. J.Bioenerg. Biomem.; 1994; 26: 291-29.

    Sastre J., pallardo F.V., Vina J.; Mitochondrial oxidative stress plays a key role in aging and opoptosis. IUBMB Life; 2000; 49(5): 427-35.

    Sastre J.,Pallardo F.V., Garcia d.,Vina J.; Mitochondria, oxidative stress and aging. Free, Radic. Res; 2000; 32(3): 189-198.

    Wei Y.H., Lee H.C.; oxidative stress, mitochondrial DNA mutation and Impairment of antioxidant enzumes in aging. Exp. Biol. Med.; 2002; 227(9): 671-820.

    Wei Y.H., Ma Y.S., Lee H.C., Lu C.Y.; Mitochondrial theory of aging matures- roles of mtDNA mutation and oxidative stress in human aging. Zhonghua. Yi. Xue. Za. Zhi (taipei); 2001; 64(5):259-70.

    Wallac D.C.; Mitochondrial DNA mutations in diseases of energy metabolism. J.Bioenery. Biomem; 1994;26 : 241-250.

    Wei Y.H.; oxidative stress and mitochondrial DNA mutations in human aging. Proc. Soc. Exp.Biol. Med.; 1998; 217(1):53-63.

    Wallace D.C.;Mitochondrial DNA sequence Variation in human evolution  and disease. Proc. Natl. Acad. Sci. USA.; 1994;91:8739-8746.

    White F.A., Bunn C.L.; Segregation of mtDNA in Human somatic cell by hybrides. Mol. Gen. Genet.; 1984; 197; 453-46.

    Yoshino H.,Nakagave Y., Kondo T.,mizuno Y.; Mitochondrial complex I and II activities of  lymphocytes and platelets in parkinson’s disease. J. Neur., Trans. Parrkinsons. Dis. Dement. Sect.; 1992; 2: 27-34.

    Zeviani M., Muntono F., Savarese N.;A MERRF MELAS over lap syndrome associated with a new point  mutation in the mitochondrial DNA tRNA Lys gene. Eur.J.Hum. Genet.; 1993; 1: 80-87.

    Zhang C., Baumer A., Maxwell R.J., Nagley p.; Multiple mtDNA deletions in an elderly human individual. FEBS; 1992:4-8.

تحقیق در مورد تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری, مقاله در مورد تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری, تحقیق دانشجویی در مورد تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری, مقاله دانشجویی در مورد تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری, تحقیق درباره تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری, مقاله درباره تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری, تحقیقات دانش آموزی در مورد تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری, مقالات دانش آموزی در مورد تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری ، موضوع انشا در مورد تحقیق مقاله ساختار میتوکندری در انسان و نقش آن در ایجاد بیماری های مختلف میتوکندری
ثبت سفارش
عنوان محصول
قیمت